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MICROBIOLOGIA CLÍNICA VETERINÁRIA

A Microbiologia Veterinária  estuda os microrganismos causadores de doenças em animais como bactérias, fungos, leveduras e virus em seus aspectos estruturais, fisiológicos, metabólicos e de interação com o hospedeiro.
Estes microrganismos são responsáveis pelo desenvolvimento das chamadas Doenças Infecciosas, constituindo-se em ampla área de conhecimento na Medicina Veterinária.

A identificação dos microrganismos é um dos trabalhos mais importantes realizados pelo microbiologista e requer experiência e técnicas precisas para observar um conjunto complexo de características morfológicas macro e microscópicas, bioquímicas, genéticas e de patogenicidade para classificá-los.

Compreende também o conhecimento sobre fármacos e seu efeito sobre os diferentes agentes etiológicos. Através de antibiogramas indica qual antibiótico ou antifúngico deve ser utilizado especificamente em cada caso e, por isso, é capaz de orientar terapias eficázes.
Também está relacionada à compreensão da resistência antimicrobiana, seus mecanismos e as possíveis alternativas terapêuticas frente a este importante desafio da atualidade.
Outro campo de interesse é o estudo das doenças com potencial zoonótico e daquelas transmitidas a partir de alimentos de origem animal.

A Microbiologia Clínica tem como objetivo desenvolver visão crítica dos procedimentos insituídos no laboratório, bem como acompanhar as novas tendências que acompanham o futuro para o diagnóstico microbiológico.

O LAB&VET iniciou suas atividades em 1992 como um laboratório exclusivamente de Microbiologia e possui, desta forma, grande tradição nesta área diagnóstica, sendo referência no apoio ao Médico Veterinário clínico para o tratamento de Doenças Infecciosas.

MICROBIOLOGIA CLÍNICA - EXAMES		MATERIAL		RESULTADO
Coprocultura + Antibiograma		Fezes* ou “Swab” retal**		5 a 7 dias
Cultura (bactérias e leveduras) de pele/ouvido/olho + Antibiograma. Inclui cultura fúngica.		“Swab”** e/ou Raspado superficial de pele e pelos***		5 a 7 dias
Cultura bacteriana automatizada + MIC		Diversos		3 a 5 dias
Cultura de bactérias aeróbias e anaeróbias facultativas comuns de sítios não cutâneos + Antibiograma		Secreções, Excreções ou Fragmentos de Órgãos		5 a 7 dias
Cultura para Brucella sp		Sangue Total em frasco p/ hemocultura****, Urina***, Feto, Secreções ou Fragmentos de Órgãos		7 a 15 dias
Cultura para dermatófitos e outros fungos micelianos e leveduriformes com importância médica		Raspado superficial de pele e pelos***		7 a 30 dias
Cultura para fungos causadores de micoses profundas		Secreções, Excreções ou Fragmentos de Órgãos		7 a 30 dias
Hemocultura		Sangue Total em frasco p/ hemocultura****		7 a 15 dias
Urocultura com número de UFC + Antibiuograma		Urina***, Sêmen		5 a 7 dias
Cultura para Mycobacterium spp		Secreções, Excreções ou Fragmentos de Órgãos		20 a 60 dias
Exame direto para pesquisa de artrósporos de dermatófitos (tricografia)		Raspado superficial de pele e pelos***		24/48 h
Exame direto para pesquisa de bactérias e leveduras (método de Gram - inclui pesquisa de Malassezia spp)		Secreções, Excreções ou “Imprint” de Órgãos*****		24/48 h
Isolamento de anaeróbios (presença/ausência)		Sangue Total em frasco p/ hemocultura****, Secreções, Excreções ou Fragmentos de Órgãos		5 a 7 dias

*FEZES (coletor universal plástico)
- Colher amostras de fezes frescas, recém eliminadas em frasco limpo e refrigerá-las imediatamente.
- Amostras muito líquidas podem ser colhidas do piso com o auxílio de seringa. A amostra também pode ser colhida diretamente do reto.
- Quantidade: 10 a 20 g ou 10 a 20 ml.

**SWAB COM MEIO DE TRANSPORTE
O "swab" se assemelha a um contonete, formado por uma haste de plástico ou madeira e revestido, em uma das pontas com algodão especial com alta capacidade de absorção.
Para garantir a mínima interferência na qualidade do material colhido durante a fase pré-analítica é utilizado para a colheita, armazenamento e transporte da amostra, swabs estéreis com meio de Stuart.
O meio encontra-se dentro de um tubo semi-preenchido no qual é inserido o swab qu está acoplado em tampa própria que veda o recipiente.
Esse material proporciona proteção contra possíveis contaminações, além de conservar os agentes microbianos durante o transporte.

Fonte: https://www.casalab.com.br/produtos/67/3143_


SWAB ÓPTICO/CONJUNTIVAL
   
Fonte: AZEVEDO et al, 2009. 

- Limpar as pálpebras com gaze umedecida em solução fisiológica para retirar secreções e sujidades oculares externas
- Inserir swab no saco conjuntival e realizar movimentos giratórios, cuidando para não entrar em contato com o tarso pálpebral e pálpebras.
- Colocar o swab no frasco contendo o meio de transporte.
- Identificar a amostra.
- Conservar sob refrigeração (2 a 8ºC).






SWAB ÓTICO
 Fonte: LIMA et al, 2012.                                    

- Realizar rigorosa antissepsia da região externa do pavilhão auricular.
- Colher com o swab o material diretamente do conduto auditivo.
- Colocar o swab no frasco contendo o meio de transporte.
- Identificar a amostra.
- Conservar sob refrigeração (2 a 8ºC).








SWAB RETAL
Fonte: http://www.asiahomes.com/angelfire/tpvets_Aug26_14.htm

- Umedecer o swab em salina estéril (não usar gel lubrificante) e inserir 1 a 2 cm além do esfíncter anal, fazendo movimentos giratórios.
- Ao retirar, certifique-se que existe coloração fecal no algodão.
- Colocar o swab no frasco contendo o meio de transporte.
- Identificar a amostra.
- Conservar sob refrigeração (2 a 8ºC).







SWAB CUTÂNEO
Fonte: https://www.researchgate.net/profile/Jean-Marc_Hero

- Realizar tricotomia e rigorosa antissepsia da região.
- Em lesões superficiais colher com movimentos giratórios e vitar contato com a pele ao redor.
- Em fístulas e abscessos abertos, espremer o material da profundidade para colher com o swab.
- Colocar o swab no frasco contendo o meio de transporte.
- Identificar a amostra.
- Conservar sob refrigeração (2 a 8ºC).






***RASPADO SUPERFICIAL DE PELE E PELOS
Fonte: http://fmvz.uas.edu.mx/CHPE5.html

- Método para detecção de fungos.
- Caso o animal esteja em tratamento, aguardar 15 dias após suspender o antifúngico, antes de realizar a colheita.
- Caso esteja sendo aplicado medicamento tópico, como pomada ou creme, lavar o local e colher no dia seguinte.
- Higienizar a área da lasão com água e sabão neutro, cortar o excesso de pelos e fazer antissepsia com álcool 70%.
- Para a acolheita, utilizar lâmina de bisturi estéril.
- Com a lâmina de bisturi, realizar raaspado de escamas superficiais de pele.
- Os pelos devem ser colhidos na região das bordas da lesão com auxílio de pinça ou avulsão.
- Acondicionar em coletor estéril ou entre lâmnias de microscopia (vedar o vão entre as lâminas com esparadrapo ou envolver com filme de PVC)..
- Identificar a amostra.
- Manter à temperatura ambiente.


****SANGUE TOTAL EM FRASCO PARA HEMOCULTURA

- Realizar tricotomia e rigorosa antissepsia com álcool iodado da região a ser puncionada.
- Atenção para não palpar novamente a pele sobre a veia a ser puncionada.
- Colher por punção venosa de 2 a 5 ml de sangue.
- Desinfetar a tampa do frasco de hemocultura com álcool 70 ou álcool iodado.
- Inocular o sangue no frasco.
- Homogeneizar a amostra com o meio de cultura.
- Identificar a amostra.
- Manter à temperatura ambiente.

> Solicitar a entrega do frasco com antecedência.




*****IMPRINT DE ÓRGÃOS (DECALQUE, IMPRESSÃO OU "CLAPS")
Denomina-se decalque, impressão ou "claps" o procedimento no qual se coloca a a área do tecido em contato com a superfície da lâmina de vidro, de modo semelhante ao utilizado para se obter uma impressão digital.
Neste método, as células superficiais da lesão são transferidas para a superfície da lâmina.
É utilizado normalmente a prtir de fragmentos obtidos durante necropsias, biópsias ou diretamente em lesões cutâneas.

MÉTODO:
                                                           
Referência: AYELE et al, 2017.                                                                                                                                                                                                                                            Referência: https://acervovet.blogspot.com/2015/11/citologia.html

- Para fragmentos de tecido: obter fragmentos com 1 a 2 cm²; secar levemente em papel de filtro (A); pressionar levemente sobre a lâmina em vários locais ao longo de seu comprimento (B, C).
- Para lesões cutâneas: a lâmina é pressionada diretamente contra a área da lesão (figura à direita).
- Secar o material ao ambiente.


REFERÊNCIAS

AYELE, L.; MOHAMMED, C.; YIMER, L. Review on Diagnostic Cytology: Techniques and Applications in Veterinary Medicine. J. Vet. Sci. Technol., v.8, n.408, 2017. available fron <https://www.omicsonline.org/open-access/review-on-diagnostic-cytology-techniques-and-applications-inveterinary-medicine-2157-7579-1000408.php?aid=85194> . access on  16  Sept.  2019. doi: 10.4172/2157-7579.1000408.

ANDRADE, Alexandre Lima de et al. Microbiota conjuntival de cães sadios da cidade de Araçatuba (SP). Arq. Bras. Oftalmol., v.65, p.323-326, 2002.

AZEVEDO, Gyslliana Medeiros et al. Avaliação citológica da conjuntiva de cães clinicamente sadios pelo método panóptico. Revista Científica de Medicina Veterinária - Pequenos Animais e Animais de Estimação, v.7, n.33, p.473-477, 2009. Disponível em: < http://medvep.com.br/wp-content/uploads/2016/04/Artigo184.pdf >. Acesso em: 19 Set. 2019.

CENCI, A. ; BRAGA, A. de C. ; BRITO, B. G. ; CERVA, C. ; MAYER, F. Q. ; KARAM, F. S. C. ; MARTINS, J. R. de S. ; SIMÕES PIRES NETO, J. A. ; ROSA, J. C. de A. ; BRITO, K. C. T. de ; COPPOLA, M. de M. ; DASSO, M. G. ; ROEHE, P. M. ; DOYLE, R. L. ; BOROWSKI, S. Manual de Coleta e Remessa de Amostras para Diagnóstico Laboratorial Veterinário. Porto Alegre : FEPAGRO, 2011. Boletim Técnico, n. 20.

LIMA, Débora Costa Viegas de et al. Microbiologia de swabs retais e otológicos em carnívoros silvestres do zoológico do Parque Estadual de Dois Irmãos, Pernambuco. Pesq. Vet. Bras.,  Rio de Janeiro ,  v. 32, n. 2, p. 159-164,  Feb.  2012 .   Available from . access on  19  Sept.  2019.  http://dx.doi.org/10.1590/S0100-736X2012000200012.

SANTOS, L.G.F.; ALMEIDA, A.B.P.F.; SILVA, M.C., OLIVEIRA, J.T.; DUTRA, V.; SOUZA, V.R.F.  Microbiota conjuntival de cães hígidos e com afecções oftálmicas. Acta Scientiae Veterinariae. v.37, n.2, p.165-169, 2009.

UFMG. Dermatologia em cães e gatos. Cadernos Técnicos de Veterinária e Zootecnia, n.71, Dez. 2013.